2. 宁波大学医学院, 宁波 315211
2. School of Medicine, Ningbo University, Ningbo 315211, China
急性肺损伤(acute lung injury, ALI)是一种威胁生命的疾病,与脓毒症、休克、创伤、烧伤、或急性重症胰腺炎等有关,其最常见的病因是感染,其特征在于非心源性肺水肿、呼吸窘迫、低氧血症等[1-2]。严重的ALI可导致急性呼吸窘迫综合征(acute respiratory distress syndrome, ARDS),表现为肺顺应性降低、顽固性低氧血症、呼吸衰竭等。近年来,对ALI/ARDS的定义、发病机制和诊治的研究取得了很大进展,但由于其发病机制尚不完全明确,治疗仍较为困难[3]。
1-磷酸硝胺醇受体(sphingosine 1-phosphate receptors, S1PRs)是一类跨膜的G蛋白偶联受体,其配体是S1P。S1P-S1PRs信号通路激活后,可调节血管生成、细胞增殖和机体炎症反应等,参与到多种疾病的病理生理过程中[4]。S1PR3是S1PRs家族的重要成员,在单核/巨噬细胞细胞膜上高表达[5]。本课题组前期研究表明,S1PR3在巨噬细胞对细菌清除中发挥了重要作用[6]。本研究通过设计、合成新型的S1PR3特异性激动剂GPS-725.017,探讨GPS-725.017对ALI的保护作用及其分子机制。
1 材料与方法 1.1 主要材料与主要试剂 1.1.1 实验动物6~8周龄雄性C57BL/6小鼠,健康清洁级,体重20~24 g,60只(购自上海斯莱克实验动物有限公司)。
1.1.2 主要试剂大肠杆菌(E.coli)菌株(ATCC 25922)用于构建小鼠急性肺损伤模型;GPS-725.017购自金斯瑞生物科技有限公司;DMEM细胞培养基(Gibco,美国)用于培养小鼠肺脏巨噬细胞;二甲亚砜(国药, 中国)用于溶解GPS-725.017;磷酸盐缓冲液(上海语纯,中国)用于肺脏灌洗;氯化钠(国药,中国)、胰蛋白胨(Thermo Oxoid,美国)、酵母提取物(Thermo OXOID,美国)、琼脂粉(国药,中国)等用于配置细菌培养基;酶联免疫吸附测定(enzyme-linked immuno sorbent assay, ELISA)试剂盒,包括肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factor-α, TNF-α)、白介素IL-1β(Interleukin-1β, IL-1β),购自联科生物。
1.2 实验方法 1.2.1 GPS-725.017的设计3个氨基酸(RPY)结构来源于S1PR3胞内的第二个环。对该短肽的结构进行重新设计:将正亮氨酸(Norleucine, Nle)和肉豆蔻酸(myristic acid, myr)加于该短肽的N端,中间以甘氨酸(G)连接,C端酸化修饰,结构序列为Myr-G-Nle-R-P-Y-NH2,合成后溶解于二甲亚砜(dimethyl sulfoxide, DMSO)中[7]。
1.2.2 构建小鼠肺损伤的实验模型及分组随机将实验小鼠分为三组,假手术组、溶剂组和GPS-725.017治疗组,每组小鼠数目根据实验目的确定(n=5或10)。溶剂组和GPS-725.017治疗组小鼠气管内注射50 μL大肠杆菌(5×106 CFU),诱导ALI模型[8];假手术组只给予50 μL磷酸盐缓冲液(phosphate buffer, PBS)。造模后,GPS-725.017治疗组再给予GPS-725.017。溶剂组、假手术组只给予相同体积的溶剂。
1.2.3 GPS-725.017治疗和生存率观察小鼠ALI模型建立后,GPS-725.017治疗组立即气管内给予GPS-725.017(按10 mg/kg)。溶剂组及假手术组给予相同体积的溶剂。各组经上述处理后,连续48 h观察小鼠存活情况(n=10)。
1.2.4 外周血及肺脏细菌负荷及炎性因子检测假手术组、GPS-725.017治疗组及溶剂组(每组n=5)分别于ALI模型后5 h,按400 mg/kg的剂量通过腹腔注射麻醉剂(4%水合氯醛),进行麻醉。采用心脏釆血法,收集小鼠全血于抗凝管。抽取500 μL PBS对小鼠进行支气管肺泡灌洗,连续3次。将所得全血以及肺泡灌洗液(bronchoalveolar lavage fluid, BALF)进行梯度稀释,LB平板涂板,置于37℃培养箱中,过夜培养,并计数细菌,计算出单位体积血液或肺泡灌洗液中CFU。利用ELISA试剂盒检测各组小鼠血液及肺泡灌洗液中炎性因子的含量。
1.2.5 肺泡灌洗液中巨噬细胞提取小鼠ALI模型5 h后取BALF,350 g离心5 min,弃上清液,细胞用10 mL PBS重悬,并用PBS清洗细胞2次。清洗完毕后,用DMEM培养基将细胞重悬,接种到细胞培养瓶内,于37℃,5% CO2培养箱中孵育1.5~2 h,使细胞贴壁。孵育完毕后,去除上清中未贴壁细胞,加入2mL DMEM培养基清洗细胞,重复2~3次。培养瓶中加1 mL PBS(含5 mmol/L EDTA)消化细胞,孵育5 min,收集细胞悬液,紧接着移液,加入1 mL DMEM培养基冷浸。
1.2.6 Western blot法测定肺泡巨噬细胞内Vps34蛋白含量测定将上述各组别分离出的肺泡巨噬细胞计数,调整细胞数目为2×106置于EP管中,加入RIPA裂解液(含1% PMSF),冰上操作,每隔5 min充分震荡EP管,离心(14 000 r/min,4℃,15 min),吸取上清液,进行十二烷基硫酸钠聚丙烯酰胺凝胶电泳(sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis, SDS-PAGE),转膜,用抗Vps34(1∶1 000,Santa Cruz,USA)、抗β-actin(1∶2 000,Santa Cruz,USA)于4℃过夜孵育,然后加二抗室温下孵育2 h,ECL试剂显色,通过JY-Clear ECL型化学发光成像系统对各蛋白进行显影。Image J软件定量分析蛋白条带。
1.2.7 肺组织的采集及病理学检测假手术组、GPS-725.017治疗组和溶剂组小鼠(每组n=5)分别在模型后12 h,按400 mg/kg的剂量通过腹腔注射麻醉剂(4%水合氯醛),进行麻醉;提取小鼠肺脏组织。取某一肺叶于4%多聚甲醛中固定,制作石蜡切片,并使用苏木精-伊红(hematoxylin eosin stain, H & E)进行染色。将小鼠肺脏组织切片于显微镜下拍照,并对肺脏损伤情况进行评分。评分标准如下:1分,正常;2分,为肺间质炎症细胞浸润 < 50%;3分,肺间质炎症细胞浸润 > 50%;4分,肺脏实变并炎症细胞浸润 < 50%;5分,肺脏实变并炎症细胞浸润 > 50%[8-9]。利用统计软件对各组小鼠评分进行分析。
1.3 统计学方法使用GraphPad Prism 7.0软件进行统计学分析,生存率采用对数秩检验(Log-rank test)进行分析,计量资料采用均数±标准差(x±s)表示,组间数据采用one-way ANOVA进行检验分析,以P < 0.05为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 S1PR3特异性激动肽GPS-725.017的设计及结构序列源于S1PR3胞内第二个环的特异性激动肽KRX 725的氨基酸序列是(143 M-R-P-Y-D-A-N-K-R 151)。前期研究证明,该短肽能特异性激活S1PR3,增强巨噬细胞对细菌的清除作用,改善脓毒症小鼠预后[9]。在此研究基础上重新设计,以3个氨基酸核心序列(144 R-P-Y 146)为母核结构,N末端连接一个非天然氨基酸Nle,组成Nle-R-P-Y短肽,进一步将myr加于该肽的N端,C末端进行酸化修饰,设计得到一种新的结构序列(Myr-G-Nle-R-P-Y-NH2),并命名为GPS-725.017[7]。具体结构序列见表 1。
名称 | 氨基酸序列 |
KRX-725 | 143 M-R-P-Y-D-A-N-K-R 151 |
GPS-725.017 | Myr-G-Nle-R-P-Y-NH2 |
建模及治疗后48 h,GPS-725.017治疗组小鼠(n=10)生存率显著高于溶剂组(P < 0.01),见图 1。
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建模及治疗后48 h,GPS-725.017治疗组小鼠生存率显著高于溶剂组(n=10),aP < 0.01;Vehicle为溶剂组、GPS-725.017为GPS-725.017治疗组、Sham为假手术组 图 1 感染小鼠生存率分析 Fig 1 Kaplan-Meier survival analysis of infected mice |
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为评估ALI小鼠肺脏细菌感染的情况,在GPS-725.017干预后5 h,采集假手术组、溶剂组和GPS-725.017治疗组(n=5)小鼠的全血及肺泡灌洗液,计数细菌量。如图 2,溶剂组和GPS-725.017治疗组小鼠肺脏及血液细菌负荷较假手术组明显增加,GPS-725.017治疗组肺泡灌洗液和血液中的细菌量均显著低于溶剂组(P < 0.001)。
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建模及治疗后5 h,溶剂组和GPS-725.017治疗组小鼠肺脏及血液细菌负荷较假手术组明显增加(n=5),aP < 0.001;GPS-725.017治疗组血液中和肺泡灌洗液中的CFU值显著低于溶剂组(n=5),aP < 0.001;Vehicle为溶剂组、GPS-725.017为GPS-725.017治疗组、Sham为假手术组 图 2 感染小鼠肺泡灌洗液和血液细菌负荷 Fig 2 Bacterial burden of bronchoalveolar lavage fluid and blood in infected mice |
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为明确GPS-725.017对ALI小鼠肺脏损伤严重程度的影响,GPS-725.017治疗后5 h取各组小鼠(n=5)外周血及肺泡灌洗液,对小鼠外周血及肺泡灌洗液中的炎性因子TNF-α、IL-1β水平进行检测。如图 3所示,溶剂组和GPS-725.017治疗组小鼠外周血及肺泡灌洗液中的炎性因子TNF-α、IL-1β水平较假手术组明显上调,GPS-725.017治疗组血液和肺泡灌洗液中的TNF-α、IL-1β水平均显著低于溶剂组(P < 0.001)。
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建模及治疗后5 h,溶剂组和GPS-725.017治疗组小鼠外周血及肺泡灌洗液中的炎性因子TNF-α、IL-1β水平较假手术组明显上调,GPS-725.017治疗组血液中的TNF-α、IL-1β水平显著低于溶剂组,aP < 0.001;GPS-725.017治疗组的肺泡灌洗液TNF-α、IL-1β水平也均明显低于溶剂组,aP < 0.001;Vehicle为溶剂组、GPS-725.017为GPS-725.017治疗组、Sham为假手术组 图 3 感染小鼠肺泡灌洗液和血液炎症因子水平 Fig 3 Levels of the proinflammatory cytokines of bronchoalveolar lavage fluid and blood in infected mice |
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溶剂组和GPS-725.017治疗组小鼠肺泡巨噬细胞内Vps34蛋白表达水平在造模后较假手术组均明显上调(n=3),且GPS-725.017治疗组肺泡巨噬细胞内Vps34蛋白表达水平明显高于溶剂组,差异具有统计学意义(P < 0.01)。见图 4。
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建模及治疗后5 h,提取肺泡灌洗液中巨噬细胞,溶剂组和GPS-725.017治疗组小鼠肺泡巨噬细胞内Vps34蛋白表达水平在造模后较假手术组均明显上调,GPS-725.017治疗组肺泡巨噬细胞内Vps34蛋白表达水平明显高于溶剂组,bP < 0.01 图 4 肺泡巨噬细胞Vps34蛋白表达水平 Fig 4 Vps34 protein expression level of alveolar macrophages in vitro |
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为评估GPS-725.017对ALI小鼠肺脏损伤的改善情况,在GPS-725.017治疗后12 h取某一肺叶于4%甲醛固定、制作切片以及进行H & E染色,显微镜下拍照后对肺脏进行组织学评分(n=5)。结果发现,溶剂组有明显ALI的病理改变,包括弥漫性肺泡损伤、肺泡充血、大量炎症细胞浸润等;GPS-725.017治疗后肺损伤明显减轻,差异具有统计学意义(P < 0.001)。见图 5。
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建模及治疗后12 h,取肺组织H & E染色,溶剂组有明显ALI的病理改变,包括弥漫性肺泡损伤、肺泡充血、大量炎症细胞浸润等;GPS-725.017治疗后肺损伤明显减轻,bP < 0.001;Vehicle为溶剂组、GPS-725.017为GPS-725.017治疗组、Sham为假手术组;标尺为50 μm 图 5 急性肺损伤小鼠肺脏病理学评分 Fig 5 Lung injury of ALI mice |
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Hou等[6]前期研究提示,巨噬细胞S1PR3在细菌清除中发挥重要作用,S1PR3的激活促使了空泡分选蛋白34(vacuolar protein sorting 34, Vps34)招募到巨噬细胞早期吞噬体,使磷脂酰肌醇(phosphatidylinositol, PI)磷酸化成3-磷酸磷脂酰肌醇[(phosphatidylinositol-3-phosphate, PtdIns(3)P)],通过磷酸化使PtdIns (3)P的FYVE结构域和PX结构域改变,募集早期内体抗原分子1(Early endosomes antigen 1,EEA1)等关键调节因子,进而调控了吞噬体的成熟,从而增强巨噬细胞杀菌作用[10-13]。“S1PR3-G protein-Vps34-EEA1信号通路”调控巨噬细胞吞噬体功能,影响脓毒症预后。由此提示,S1PR3是治疗细菌感染的重要靶点,特异性S1PR3激动肽可能是治疗急性肺损伤的潜在药物。课题组前期研究表明,源于S1PR3胞内第二个环的特异性激动肽KRX 725(143 M-R-P-Y-D-A-N-K-R 151)可特异性激活S1PR3,上调细胞外信号调节激酶(Extracellular Signal Regulated Kinase, ERK)磷酸化水平,提高巨噬细胞清除细菌的能力,改善脓毒症小鼠预后[9]。但该多肽存在跨膜入胞时间较长,结构不稳定、容易被降解等缺点。课题组前期另一项研究也证实,3个同源于S1PR3胞内第二个环的核心氨基酸序列(144 R-P-Y 146)是KRX725发挥作用的核心序列。在此基础上,将核心氨基酸序列的N端连接一个非天然氨基酸Nle,组成Nle-R-P-Y短肽,在该肽N端增加了9个精氨酸合成的另一种S1PR3特异性激动肽RY-15[14]。研究证实,RY-15可以进入到巨噬细胞内,特异性激动S1PR3,从而促进巨噬细胞清除细菌作用[15]。虽然RY-15的入胞及激动效能有所增强,但是9个精氨酸修饰也增加了多肽的正电荷从而增加了细胞毒性。
本研究对前期的多肽进一步优化,在Nle-R-P-Y短肽基础上,在其N末端连接一个myr,C端酸化修饰,生成一种新型的S1PR3激动肽,并命名为GPS-725.017。前期体外研究证明,GPS-725.017通过调控S1PR3,活化下游MAPKs通路,具有较强的激动作用[7],然而在体内的作用并不明确。本研究模拟临床患者感染性肺炎所致ALI的发病过程,通过向小鼠气管内注射大肠杆菌,诱导ALI模型[16],以证实GPS-725.017对细菌性肺损伤小鼠的治疗作用。研究结果显示:建模及治疗后48 h,GPS-725.017治疗组小鼠生存率显著高于溶剂组;GPS-725.017治疗5 h后,GPS-725.017治疗组小鼠肺脏及外周血细菌负荷更少,肺脏炎症因子及病理学损伤程度水平更低。在相关杀菌分子机制研究方面,GPS-725.017组小鼠的肺泡巨噬细胞内Vps34蛋白表达水平明显上调。
然而本实验也存在一些局限性。首先,本实验未进行药物的毒性实验、药代动力学实验及与S1PR3结合亲和力测试实验,而这些研究对于该多肽的临床转化具有重要意义。其次,本研究采用细菌的大肠杆菌,是革兰氏阴性菌,还未选取常见的革兰氏阳性菌等其他菌属进行实验,仍需进一步探究验证。
综上所述,本研究认为,GPS-725.017可以明显减轻ALI小鼠的肺部损伤程度,显著提高ALI小鼠的生存率,具体的作用机制为:该多肽特异性激动肺泡巨噬细胞膜上S1PR3受体,进而上调胞内Vps34蛋白表达水平,从而促进肺泡巨噬细胞清除细菌。本研究为ALI的治疗提供了一种新的方法,但GPS-725.017作为一种新型药物,其安全性、药代动力学以及与S1PR3结合的参数仍有待于进一步研究。
利益冲突 所有作者声明无利益冲突
作者贡献声明 郑君刚:总体负责实验设计、实验实施、数据分析以及论文撰写;杨余、许晶晶:参与实验实施和数据分析;李勇、张鹏杰、王俊、卢子会:参与数据分析和论文撰写;黄长顺:参与实验设计;曹刚:参与论文撰写;所有作者参与定稿
[1] | Su RN, Zhang Y, Zhang JB, et al. Nanomedicine to advance the treatment of bacteria-induced acute lung injury[J]. J Mater Chem B, 2021, 9(44): 9100-9115. DOI:10.1039/d1tb01770e |
[2] | 郑君刚, 侯金超, 张凯, 等. 苏拉明对脂多糖致小鼠急性肺损伤的防治作用[J]. 中华急诊医学杂志, 2015, 24(12): 1412-1416. DOI:10.3760/cma.j.issn.1671-0282.2015.12.019 |
[3] | Thompson BT, Chambers RC, Liu KD. Acute respiratory distress syndrome[J]. N Engl J Med, 2017, 377(19): 1904-1905. DOI:10.1056/NEJMc1711824 |
[4] | Cartier A, Hla T. Sphingosine 1-phosphate: Lipid signaling in pathology and therapy[J]. Science, 2019, 366(6463): eaar5551. DOI:10.1126/science.aar5551 |
[5] | Li Q, Li Y, Lei C, et al. Sphingosine-1-phosphate receptor 3 signaling[J]. Clin Chim Acta, 2021, 519: 32-39. DOI:10.1016/j.cca.2021.03.025 |
[6] | Hou JC, Chen QX, Wu XL, et al. S1PR3 signaling drives bacterial killing and is required for survival in bacterial Sepsis[J]. Am J Respir Crit Care Med, 2017, 196(12): 1559-1570. DOI:10.1164/rccm.201701-0241OC |
[7] | 陈悦, 侯金超, 孙亚奇, 等. Myristoyl-glycine修饰的S1PR3特异性激动肽跨膜激活效应研究[J]. 中华急诊医学杂志, 2017, 26(12): 1418-1421. DOI:10.3760/cma.j.issn.1671-0282.2017.12.017 |
[8] | Berger J, Delphin E. Acute lung injury and repair: scientific fundamentals and methods[J]. Anesth Analg, 2017, 125(5): 1809. DOI:10.1213/ANE.0000000000002406 |
[9] | 张坚, 侯金超, 徐孟龙, 等. S1PR3激动剂KRX-725促进细菌清除影响脓毒症小鼠预后[J]. 中华急诊医学杂志, 2016, 25(1): 57-62. DOI:10.3760/cma.j.issn.1671-0282.2016.01.013 |
[10] | Berger SB, Romero X, Ma CY, et al. SLAM is a microbial sensor that regulates bacterial phagosome functions in macrophages[J]. Nat Immunol, 2010, 11(10): 920-927. DOI:10.1038/ni.1931 |
[11] | Okkenhaug K. Signaling by the phosphoinositide 3-kinase family in immune cells[J]. Annu Rev Immunol, 2013, 31: 675-704. DOI:10.1146/annurev-immunol-032712-095946 |
[12] | Slessareva JE, Routt SM, Temple B, et al. Activation of the phosphatidylinositol 3-kinase Vps34 by a G protein alpha subunit at the endosome[J]. Cell, 2006, 126(1): 191-203. DOI:10.1016/j.cell.2006.04.045 |
[13] | Beas AO, Taupin V, Teodorof C, et al. Gαs promotes EEA1 endosome maturation and shuts down proliferative signaling through interaction with GIV (Girdin)[J]. Mol Biol Cell, 2012, 23(23): 4623-4634. DOI:10.1091/mbc.E12-02-0133 |
[14] | 方向明, 侯金超, 雷如意, 等. 一种多肽及其改造体在制备免疫调节药物中的应用: CN107469067A[P]. 2017-12-15. |
[15] | 方向明, 王俊, 雷如意, 等. S1PR3特异性激动剂RY-15促进细菌清除的作用研究[J]. 中华急诊医学杂志, 2018, 27(10): 1117-1120. DOI:10.3760/cma.j.issn.1671-0282.2018.10.011 |
[16] | Ray NB, Durairaj L, Chen BB, et al. Dynamic regulation of cardiolipin by the lipid pump Atp8b1 determines the severity of lung injury in experimental pneumonia[J]. Nat Med, 2010, 16(10): 1120-1127. DOI:10.1038/nm.2213 |