中华急诊医学杂志  2019, Vol. 28 Issue (6): 712-716   DOI: 10.3760/cma.j.issn.1671-0282.2019.06.011
N-乙酰半胱氨酸在百草枯诱导A549细胞转分化过程中的保护作用
宋扬1 , 孙昊1 , 余国琴2 , 张晓敏1 , 吴雨璇1 , 王军3 , 张劲松1     
1 南京医科大学第一附属医院急诊医学科 210029;
2 南京医科大学第一附属医院神经内科 210029;
3 南京医科大学公共卫生学院卫生毒理系,现代毒理学教育部重点实验室 211166
摘要: 目的 探讨N-乙酰半胱氨酸(N-Acetyl-cysteine, NAC)在百草枯(paraquat, PQ)诱导人非小细胞肺癌细胞(A549细胞)发生上皮间充质细胞转分化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)过程中的保护作用以及机制。方法 利用A549细胞暴露于不同浓度的PQ溶液,构建拟肺泡上皮细胞EMT模型。分别于第0,2,4,6天收获细胞。观察NAC干预效果时,在PQ暴露前2 h加入10 mmol/L NAC孵育细胞。光镜下观察A549细胞的形态学改变,实时定量PCR(Real-time quantitative PCR, RT-qPCR)和Western-blotting技术检测EMT标记物E-cadherin和α-SMA的表达变化以及TGF-β1的表达水平。结果 30 μmol/L PQ染毒A549细胞4 d后建立EMT模型,与对照组相比,PQ组A549细胞表现出典型的形态学改变,细胞由鹅卵石样的上皮细胞外观特征向纺锤形的间质细胞样外观特征改变。Western-blotting结果表明PQ组的A549细胞的TGF-β1、α-SMA蛋白水平表达明显高于对照组,E-cadherin蛋白水平表达低于对照组(均P < 0.05)。10 mmol/L NAC预孵育可以有效逆转PQ暴露引起的上述改变,表现为EMT指标E-cadherin升高而α-SMA下降(均P < 0.05),且形态学也发现在应用NAC后,纺锤形的间质细胞样的细胞减少且细胞数量有所增加。结论 通过细胞实验证明,PQ暴露可以引起上皮细胞发生上皮间充质细胞转分化,NAC在此过程中具有细胞保护作用。
关键词: 百草枯     N-乙酰半胱氨酸     TGF-β1     上皮间充质细胞转分化    
N-Acetyl-cysteine protects A549 cells in paraquat-induced epithelial-mesenchymal transition
Song Yang1 , Sun Hao1 , Yu Guoqin2 , Zhang Xiaomin1 , Wu Yuxuan1 , Wang Jun3 , Zhang Jinsong1     
1 Department of Emergency Medicine, the First Affiliated Hospital of Nanjing Medical University, Nanjing 210029, China;
2 Department of Neurology, the First Affiliated Hospital of Nanjing Medical University, Nanjing 210029, China;
3 Key Lab of Modern Toxicology (NJMU), Ministry of Education, Department of Toxicology, School of Public Health, Nanjing Medical University, Nanjing 211166, China
Abstract: Objective To investigate the regulatory mechanism of Paraquat (PQ)-induced epithelial-mesenchymal transition (EMT) and the protective mechanism of N-acetyl-cysteine (NAC) in PQ-induced A549 cells by EMT markers (E-cadherin and α-smooth muscle actin). Methods EMT model was established by 30 μmol/L PQ-exposed A549 cells for 4 d. The application of 10 mmol/L NAC was incubated with A549 cells for 2 h in advance. Morphological changes of A549 cells were observed under light microscope. Western blot was used to detect the expression levels of TGF-β1, E-cadherin and α-smooth muscle actin. Results In PQ-induced EMT model, the PQ group showed typical morphological changes, and the cells changed from cobblestone-like epithelial appearance to spindle-shaped mesenchymal-like appearance compared to the control group. Western blotting showed that the protein levels of TGF-β1 and α-smooth muscle actin in the PQ group were significantly increased and the protein levels of E-cadherin were decreased in the PQ group (all P < 0.05). NAC preincubation can effectively reverse the above changes caused by PQ exposure: the protein levels of E-cadherin and α-smooth muscle actin were significantly increased and decreased, respectively and morphological changes showed more cobblestone-like epithelial appearance. Conclusion Cell experiments showed that PQ exposure can cause EMT in epithelial cells, and NAC has a protective effect in this process. Thus, it may provide new ideas and strategies for the treatment of pulmonary fibrosis caused by PQ poisoning in clinical practice.
Key words: Paraquat     N-Acetyl-cysteine     Transforming growth factor-β1     Epithelial-mesenchymal transition    

百草枯(paraquat,PQ)是一种对人类等哺乳动物有剧毒的化合物,我国尽管已经限制了PQ液体剂型的销售,但仍存在已售农药的中毒问题以及PQ与其他农药混配导致的中毒情况[1]。已知PQ摄入人体后,主要在肺中聚集,引起急性肺损伤和快速肺纤维化,病死率极高[2]。研究发现,上皮间充质细胞转分化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)过程中参与了PQ引起的肺纤维化,表现为小鼠肺组织内肺泡上皮细胞标记物SPC与间充质细胞标记物α-SMA共表达,可能是PQ致快速肺纤维化的机制之一[3]。N-乙酰半胱氨酸(N-Acetyl-cysteine,NAC)具有清除自由基的特性,是临床上常用的抗氧化剂,被认为是一种安全且耐受良好的辅助药物[4]。NAC是体内还原型谷胱甘肽(glutathione,GSH)的前体,具有抗氧化和强效抗炎作用[5]。在肾、肝、肾上腺、肺、脑组织中,NAC通过半胱氨酸载体介导机制实现主动转运[6]。NAC在修复过程中具有增强细胞增殖、促进细胞迁移和创面愈合等多种功能[7]。在大鼠肾上腺嗜铬细胞瘤细胞(PC-12)中,NAC可以通过抗氧化和增强线粒体功能减轻PQ引起的细胞自噬[8]。另外,NAC可通过激活Wnt信号通路减轻PQ所致的神经毒性[9]。中国专家共识[10]和韩国指南[11]均建议PQ中毒患者使用NAC治疗。然而,NAC在PQ所致肺损伤及肺纤维化中的保护机制尚未完全阐明。本研究通过体外细胞实验,观察TGF-β1, EMT相关指标E-cad和α-SMA在PQ致A549细胞转分化过程中的改变和NAC在此过程中的保护作用,进而为临床PQ中毒致肺纤维化的治疗提供理论依据和潜在治疗靶点。

1 材料与方法 1.1 A549细胞EMT模型的建立

人非小细胞肺癌细胞(A549)购于中国科学院细胞库,A549细胞在培养箱(37 ℃、含5% CO2)中,按2×103/mL的密度接种,培养在含10%胎牛血清(Sciencell,美国)的1640培养基(Gibco,美国)中,待细胞贴壁后,用不同浓度(10、30、50 μmol/L)PQ持续刺激A549细胞0、2、4和6 d。实验中所用A549细胞均为生长状态良好的对数生长期细胞。

1.2 NAC对于A549细胞的预处理

A549细胞按8×103/mL的密度接种,24 h后,10 mmol/L NAC孵育2 h,应用30 μmol/L PQ刺激A549细胞4 d。

1.3 A549细胞形态学检测

待造模完成后,将培养皿置于光学显微镜(Nikon DS-U3)下观察不同条件下A549细胞形态学改变,NIS-Elements软件拍照。

1.4 A549细胞RT-q PCR

在A549细胞中加入1 mL RNAiso Plus(TaKara,日本),加入200 μL氯仿充分震荡后,室温静置5 min,离心(12 000 g,4℃,15 min)取上清,在上清中加入等体积异丙醇,混匀后室温静置10 min,离心(12 000 g,4℃,15 min)弃上清,加入75 %乙醇,轻微震荡后离心(7 500 g,4 ℃,5 min)弃上清,静置10 min待乙醇挥发后加入适量DEPC水溶解RNA。按照PrimeScriptTM RTMaster Mix(TaKara,日本)试剂盒说明书进行逆转录,按照SYBR® Premix Ex TaqTM Ⅱ(TaKara,日本)试剂盒说明书进行RT-qPCR。RT-qPCR过程中所有引物均由上海捷瑞公司设计,由南京擎科生物科技有限公司合成(表 1)。根据溶解曲线和扩增曲线得知引物特异性和扩增效率。结果计算和分析以GAPDH作为内参基因采用2-ΔΔCT法。

表 1 引物序列 Table 1 Primer sequences
种属 检测指标 正向引物序列(5’-3’) 反向引物序列(5’-3’)
E-cadherin ATGCTGATGCCCCCAATACC GCTGCTTGGCCTCAAAATCC
α-SMA GACGCCTGCTCCAAGAATTG GTCAAGCCGGACACAACGAT
GAPDH GGACCTGACCTGCCGTCTAG GTAGCCCAGGATGCCCTTGA
1.5 A549细胞Western-blotting检测

在A549细胞中加入适量ripa(sigma,美国)充分裂解20 min后离心(12 000 r/min,4 ℃,10 min),取上清,测定蛋白浓度(BCA法),加入1/4(v/v)的上样缓冲液,混匀后充分变性蛋白(100 ℃,5 min)。后将含有20 μg总蛋白的蛋白样品加入至加样孔中进行SDS-PAGE电泳。当溴酚蓝到达胶的底端处附近时结束电泳,使用Bio-Rad标准湿式转膜装置转膜(300 mA,60 min,冰浴)至0.2 μM的PVDF微孔膜(Millipore,美国)。转模结束后,将PVDF膜放置在TBST中,漂洗2 min,后用封闭液(含5 %脱脂奶粉的TBST)室温封闭1 h。封闭结束后,按照相应比例用稀释液(含5 %脱脂奶粉的TBST)稀释一抗(E-cadherin,CST #14472,1:1 000;α-SMA,Bioss bs-10196R,1:5 000;TGF-β,CST #3711,1:1 000;β-tubulin,Selleck A5032,1:1 000),4 ℃轻微摇晃孵育过夜。用TBST洗涤PVDF膜(5 min×3次)。后用封闭液稀释二抗HRP Goat Anti-Rabbit IgG(Jacksonimmuno,美国),室温轻微振荡孵育1 h,用TBST洗涤PVDF膜(5 min×3次)。将发光液均匀滴到PVDF膜上,置于Bio-rad凝胶成像系统成像,成像结果使用Image J软件扫描分析灰度值。

1.6 统计学方法

运用Graphpad Prime 6软件进行数据统计分析。本实验数据经收集整理后以均数±标准差(Mean±SD)表示,多组数据比较选择单因素方差分析(One-Way ANOVA)检验,以P<0.05差异具有统计学意义。

2 结果 2.1 时间梯度及浓度梯度下PQ诱导A549细胞EMT模型的建立

分别应用10、30、50 μmol/L PQ持续刺激A549细胞2、4、6 d。收获细胞,检测EMT指标E-cadherin和α-SMA的蛋白表达水平。如图 1所示,10 μmol/L PQ时,E-cadherin和α-SMA的蛋白表达水平均差异无统计学意义。30 μmol/L PQ时,与对照组相比,α-SMA的蛋白水平表达在4 d时显著升高,E-cadherin的蛋白水平表达显著下降,证明A549细胞发生了EMT。50 μmol/L PQ时,A549细胞在PQ刺激6 d时死亡,故无法检测。但检测2 d和4 d的蛋白时,发现E-cadherin和α-SMA的蛋白表达水平在2 d时差异无统计学意义,在4 d时都显著下降。因此,本实验选择30 μmol/L PQ刺激A549细胞4 d建立EMT模型。

A:10 μmol/L PQ分别暴露A549细胞2、4、6 d E-cadherin和α-SMA蛋白表达结果及统计图;B:30 μmol/L PQ分别暴露A549细胞2、4、6 d E-cadherin和α-SMA蛋白表达结果及统计图;C:50 μmol/L PQ分别暴露A549细胞2,4 d E-cadherin和α-SMA蛋白表达结果及统计图;与对照组比较,aP < 0.05,bP < 0.01 图 1 PQ浓度梯度和时间梯度暴露对A549细胞E-cadherin,α-SMA蛋白水平的影响 Fig 1 E-cadherin and α-SMA protein expression mediated by dose-dependent and time-dependent manner of PQ
2.2 NAC预处理对PQ诱导A549细胞EMT过程的影响

图 2所示,预孵10 mM NAC 2 h后,与PQ组相比,NAC+PQ组的E-cadherin蛋白水平表达显著升高,α-SMA的蛋白水平表达显著下降。提示NAC可以有效逆转PQ刺激A549细胞产生的EMT。

10 mmol/L NAC预孵育2 h对PQ暴露A549细胞E-cadherin和α-SMA蛋白表达结果及统计图;与对照组比较,aP < 0.05,bP < 0.01;与PQ组比较,cP < 0.05,dP < 0.01 图 2 2 NAC预处理对PQ诱导A549细胞EMT过程的影响 Fig 2 Changes of NAC pretreatment in the process of PQ-induced EMT in A549 cells
2.3 PQ和NAC对A549细胞TGF-β1水平的影响

图 3所示,与对照组相比,TGF-β1的蛋白水平表达在4 d时显著升高。预孵10 mmol/L NAC 2 h后,PQ染毒4 d,与PQ组相比,TGF-β1的蛋白水平表达显著下降,提示NAC通过抑制TGF-β1的表达抑制了PQ刺激A549细胞产生的EMT。

A:30 μmol/L PQ在不同时间点暴露于A549细胞TGF-β1蛋白水平的表达趋势; B:10 m mol/L NAC预孵2 h,30 μmol/L PQ刺激A549细胞4 d TGF-β1蛋白水平的表达趋势; 与对照组比较,aP < 0.05,bP < 0.01;与PQ组比较,cP < 0.05,dP < 0.01 图 3 TGF-β1蛋白水平的表达趋势 Fig 3 TGF-β1 protein expression
2.4 PQ和NAC对A549细胞形态学的影响

光镜下形态学结果表明,对照组A549细胞表现出鹅卵石样的上皮细胞外观特征,PQ组A549细胞表现出纺锤形的间质细胞样外观特征,也证明A549细胞发生了EMT。与PQ组相比,NAC+PQ组的细胞形态仍保持上皮细胞鹅卵石样的形态,纺锤形的间质样细胞形态的数量明显减少,表明PQ引起的EMT被部分逆转。提示NAC能够有效逆转在PQ刺激A549细胞引起的EMT, 见图 4

图 4 A549细胞形态学改变 Fig 4 morphological changes of A549 cells
3 讨论

本研究结果表明,PQ作用于A549细胞可以引起EMT。TGF-β1参与了A549细胞暴露于PQ产生的EMT,NAC的应用可以逆转EMT。PQ可以诱导A549细胞EMT的发生。本研究表明30μmol/L PQ持续刺激A549细胞4 d诱导细胞发生EMT。6 d时,EMT的两个主要标记蛋白——E-cadherin和α-SMA同时下降,意味着细胞在PQ的持续刺激过程中,由于PQ的毒性作用细胞死亡[2]。同时,形态学显示PQ暴露4 d,A549细胞数量有所减少,这可能是由于EMT过程中细胞周期进程的短暂衰减所致[12-13]

PQ被人体摄入后,通过氧化应激机制产生毒性作用,主要引起呼吸衰竭而死亡[1-2]。临床上对PQ中毒的创新治疗主要体现在抗氧化剂的应用上[11]。PQ主要在肺部积聚,尤其是在人支气管上皮细胞以及肺泡I型和Ⅱ型上皮细胞中,导致急性肺损伤和肺纤维化[14]。多项研究表明,TGF-β可以诱导细胞产生EMT[15]。本实验结果进一步证明PQ诱导TGF-β1的过表达引起了A549细胞EMT的发生。

谷胱甘肽是一种重要的抗氧化剂,是活细胞中最丰富的非蛋白硫醇,其水平通常被用作判断细胞抗氧化能力的指标[16]。研究表明,在PQ处理的大鼠肺组织中,谷胱甘肽的水平显著降低[17]。谷胱甘肽的水平与体内抗氧化作用密切相关。而且,在谷胱甘肽过氧化物酶转移酶敲除的大鼠中发现,PQ对该敲除鼠的毒性较野生型大鼠显著增加,但谷胱甘肽过氧化物酶可以有效抑制PQ对该敲除大鼠产生的毒性作用,表明谷胱甘肽过氧化物酶在PQ中毒的保护中起到关键性作用[11]

急性PQ中毒后立即产生大量的活性氧,因此应静脉注射抗氧化剂,乙酰半胱氨酸和谷胱甘肽作为常用的抗氧化剂,由于缺乏药代动力学数据,乙酰半胱氨酸抑制活性氧的最佳浓度仍未可知。根据经验,50~70 mg/kg乙酰半胱氨酸静脉注射是安全的。在体外实验中发现,乙酰半胱氨酸抑制活性氧呈现明显的剂量依赖性,10 μM的乙酰半胱氨酸可以抑制约50 %由PQ引起的活性氧[11]

NAC可以影响与氧化还原相关的细胞信号和转录通路,如PI3K/Akt,NF-κB,MAPK通路。氧化应激诱导的损伤通过激活信号通路导致生长停滞和细胞凋亡,NAC可以有效抑制此过程从而促进细胞的生长和存活,并能够减少细胞促炎因子的释放。而且,NAC作为一种黏液溶解剂可以降低痰液的黏度,使痰液液化,更容易咳出。这些作用可能在NAC的保护机制中发挥了重要的作用。本研究证明NAC可以显著抑制PQ暴露引起的EMT。

细胞抗氧化的主要机制是由过氧化物歧化酶,过氧化氢酶和谷胱甘肽过氧化物酶提供的酶,但目前尚无有效方法提高这些酶的活性。尽管在循环中可以检测到自由基,但是PQ中毒导致活性氧的产生是在细胞内,而不是细胞外[16]。例如羟自由基最初在细胞内生成,透过细胞膜扩散到细胞外。因此,最理想的抗氧化剂应可以透过细胞膜进入细胞内,但是,大部分抗氧化剂对细胞膜的通透性较低,如蛋白巯基,抗坏血酸和维生素E等。生理状态下,NAC可以透过细胞膜[6]。氧化还原循环,即肺部被供给大量电子和氧,这个过程是持续的。因此理论上不应该停止应用最佳剂量的抗氧化剂,直到氧化还原中断。然而,临床上确定抗氧化剂的最佳剂量,且持续应用高剂量的抗氧化剂相对困难[11]。动物实验可能可以进一步认证抗氧化剂的有效剂量。

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