610000 成都,成都市第三人民医院呼吸科(何庆)
Respiratory Department, Chengdu Third People’s Hospital, Chengdu 610000, China(He Q)
百草枯(paraquat,PQ)中毒所致急性肺损伤表现为早期肺泡上皮细胞受损,肺泡腔内出血,肺间质水肿伴炎症细胞浸润。晚期肺泡结构破坏、肺间质增生、肺泡萎缩及间质纤维化[1],这种表现被命名为“百草枯肺”,是急性呼吸窘迫综合征(ARDS)的一种变异形式[2]。PQ中毒目前治愈率低、导致进行性不可逆肺纤维化,出现顽固低氧血症,最终致患者死亡[3, 4, 5]。
1 材料与方法 1.1 实验动物及主要药物与试剂将清洁级Wistar 雄性大鼠 45只,体质量为200~250 g,购于四川大学实验动物中心,动物实验资格认可证:川动管第 2005-853 号。 20%PQ购自河北桃园农药有限公司(批号 20080606,避光保存)。 DAS 由美国Sigma公司生产,小鼠抗大鼠多克隆抗体(兔抗)、 NF-κB抗体均由武汉博士德生物工程有限公司提供;722S型分光光度仪由上海仪电分析仪器有限公司制造等,多聚甲醛、二甲苯、乙醇等常规试剂由海南省海口市人民医院中心实验室提供。
1.2 动物分组及模型制备与处理按随机数字表法将45 只大鼠分为生理盐水对照组(normal sham,NS)、PQ模型组及二烯丙基硫化物(diallyl sulfide,DAS)治疗组,每组 15 只。一次性灌胃PQ溶液(70 mg/kg)制备中毒动物模型;NS组灌胃等量生理盐水。制模后当日分别经腹腔注射 100 mg/kg DAS(DAS 治疗组)、等量生理盐水(PQ组和NS组),均每日 1 次,共 14 d。本实验动物处置方法符合动物伦理学标准。
1.3 检测指标及方法各组分别于制模 3、7 和14d随机每组取 5 只大鼠,给予水合氯醛麻醉,然后解剖胸腔暴露肺,行支气管肺泡盥洗,收集灌洗液测定肺泡灌洗液中蛋白含量。分离培养肺泡巨噬细胞(alveolar maerophages,AM),用细胞免疫化学方法检测AM中 NF-κB的表达情况。
1.4 统计学方法采用SPSS 20.0统计软件进行统计分析,计量资料服从正态分布变量以均数±标准差(x±s)表示,多组间比较采用方差分析,组间两两比较用SNK-q检验,以P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 大鼠原代巨噬细胞的分离培养采用差速贴壁的方法分离纯化AM,30 min可以见到较多的巨噬细胞贴壁(图 1),通过换液将大量的未贴壁细胞换去,继续培养。获得纯度较高的贴壁细胞。采用倒置显微镜下观察生活状态、Wright’ s染色光镜观察。Giemsa染色证实贴壁细胞为巨噬细胞,纯度>90%。巨噬细胞结果判断:细胞核染成紫红色或蓝紫色,胞质染成粉红色。分离纯化30 min后的肺泡巨噬细胞,培养状况良好,形态家,呈圆形,胞质透亮,折光性良好。
2.2 支气管肺灌洗液中蛋白含量变化对照组支气管肺灌洗液中有少量蛋白,并随时间进展逐渐升高,NS组和PQ组比较,支气管肺泡灌洗液中蛋白含量3 d、7 d、14 d差异均有统计学意义(均P<0.05)。PQ组和DAS组比较支气管肺泡灌洗液中蛋白含量3 d、7 d、14 d差异均有统计学意义(均P<0.05)。见表 1。
组别 | 3 d | 7 d | 14 d |
对照组 | 261.6±17.16 | 265.6±18.37 | 253.8±11.43 |
百草枯组 | 673.4±151.9 | 581.3±134.58 | 589.1±33.85 |
二烯丙基硫化物组 | 342.9±39.03 | 383.7±7.37 | 282.9±15.59 |
AM免疫细胞化学NF-κB p65,蛋白阳性反应产物呈棕黄色。NS组可见少量散在的NF-κB p65阳性免疫反应产物,主要位于胞质中(图 2)。PQ组可见较多NF-κB p65阳性免疫反应产物,随着PQ刺激时间的不同而变化。 NF-κB p65阳性免疫反应产物主要位于细胞核中,表明NF-κB被激活;图 2为PQ处理7 d后,经过DAS治疗后的AM中NF-κB 的表达情况。 巨噬细胞分离纯化培养后,再行NF-κBp65蛋白免疫组织化学染色,观察p65定位变化。在NS组可见细胞胞质浅淡着色,提示p65定位于胞质(图 2A)。PQ组胞质着色加深,同时细胞核也出现阳性着色,提示NF-κB在百草枯诱导下,其激活的蛋白从胞质转移到胞核(图 2C),阳性细胞数大量增加。DAS组胞核表达着色较浅(图 2B)。对7 d组AM通过Imagepro Media图像分析系统自动判定为细胞核NF-κB的阳性表达,分析积分吸光度和阳性染色面积积分,NS组与PQ组比较,t=6.4811,P<0.05。PQ组与其余两组比较差异具有统计学意义(P<0.05),说明DAS能下调PQ诱导的急性肺损伤时NF-κB表达。
3 讨论百草枯是目前世界范围内最广泛使用的季胺类除草剂之一。自1962年PQ问世以来,百草枯中毒导致大量人员死亡,中毒主要的原因是误服或自杀服毒。一旦服毒,于12~24 h后百草枯迅速降解,重新分配到肺、心、肾、肝导致多器官功能衰竭危及生命[6],中毒机制与肺内聚胺类物质的摄取有关[7]。目前研究表明,DAS具有下调AM中NF-κB的表达作用,其结果与Underwood等[8]研究的结果一致。NF-κB首先由Seo和Baltimore[9]于1956年在B细胞中发现。它广泛存在于真核细胞内,能与许多基因启动子区域的固定核苷酸序列结合而启动基因转录。NF-κB是由一组结构上相关的蛋白质家族组成,通常以p50和p65两个亚基组成的异二聚体的存在形式。静息状况下NF-κBp65亚基与κB抑制蛋白(inhibitor of kB,IκB)非共价键结合在一起存在于细胞质中[10]。当细胞受到内毒素、细胞因子、氧自由基、病毒、蛋白等刺激后,IκB发生磷酸化进而泛素化和降解,于是受其抑制的NF-κB得以迅速从细胞质易位到细胞核,并与基因上κB位点发生特异性结合,从而促进有关基因的转录[11],NF-κB的过度激活可导致过度强烈的炎性反应,引起肺或其他脏器的急性损伤。近年研究发现,NF-κB是一种能与多种基因启动子或增强子部位κB位点发生特异性结合并促进其相关基因转录的蛋白质因子,参与调节ARDS时炎症因子基因的表达,与ARDS发生发展密切相关。换言之,NF-κB是炎性细胞因子表达的重要调控因子。具有强大的基因调控能力,在调控与ARDS有关的细胞因子、黏附分子及其他炎性介质的转录方面起着核心作用。PQ正是通过激活NF-κB,最终触发全身性炎性反应,从而导致ARDS。通常静止状态下,NF-κB与κB抑制蛋白(IκB)结合以二聚体无活性状态存在于胞质中。在一些因子(如百草枯等)的激活下,IκB蛋白磷酸化降解而与NF-κB解离,从而使激活的NF-κB进入核内诱导基因表达[12]。另有资料证明NF-κB可以调节炎症基因的表达[13, 14, 15, 16],并广泛涉及急性肺损伤炎症介质的调节,当有炎症反应刺激,NF-κB从胞质到达胞核,活化转录基因κB依懒基因,包括E-选择蛋白、细胞间黏附分子、血管细胞黏附分子-1等[17]。从本实验可以看出,未用百草枯处理的巨噬细胞,可见胞质浅淡着色(即胞质阳性),提示P65定位与胞质;PQ处理后细胞核染色开始加深,即开始出现细胞核阳性,随着时间的延长阳性更加明显,这正与NF-κB活化过程吻合,说明PQ中毒大鼠有大量NF-κB被刺激活化,与IκB分离而有胞质进入细胞核进而参与下游炎症因子的转录和翻译,诱导炎症反应,造成肺损伤进一步加重,最终发展为纤维化。深入研究NF-κB及其调控的下游分子,将有助于揭示ARDS发病机制,探寻有效的防治措施。
[1] | 王占青,李广军,马玉英.百草枯中毒性肺损伤与肺泡表面活性物质的关系[J]. 中华急诊医学杂志,2011, 20(2):221-222. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1671-0282.2011.02.033.Wang ZQ,Li GJ,Ma YY.Relationship of paraquat poisoning lung injury and pulmonary surfactant[J]. Chin J Emerg Med,2011, 20(2):221-222. |
[2] | Vale JA, Meredith TJ, Buckley BM. Paraquat poisoning: clinical features and immediate general management[J]. Hum Toxicol, 1987, 6 (1) : 41-47. |
[3] | Costa MD, Freitas ML, Dalmolin L, et al. Diphenyl diselenide prevents hepatic alterations induced by paraquat in rats[J]. Environ Toxicol Pharmacol, 2013, 36 (3): 750-758. DOI: 10.1016/j.etap.2013.07.009. |
[4] | Bismuth C, Garnier R, Baud FJ, et al. Paraquat poisoning. An overview of the current status[J]. Drug Safety, 1990, 5 (4): 243-251. DOI: 10.2165/00002018-199005040-00002. |
[5] | Wang ZY, Ma JS,Zhang ML, et al. Serum Metabolomics in Rats after Acute Paraquat Poisoning[J]. Pharm Bull, 2015, 38 (7) : 1049-1053. DOI : 10.1248/bpb.b15-00147. |
[6] | Proudfoot AT, Swewart MS, Levitt T, et al. Paraquat poisoning: significance of plasma-paraquat concentrations[J]. Lancet, 1979, 2 (8138) : 330-332.DOI: 10.1016/S0140-6736(79)90345-3. |
[7] | 孙健波,顾鹏毅,李刚,等. 孟鲁司特对百草枯中毒所致大鼠肺损伤的治疗作用[J].中华急诊医学杂志,2012, 21(11):1198-1204. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1671-0282.2012.11.003.Sun JB, Gu PY, Li G,et al.Empirical study of therapeutic effect of montelukast on acute lung injury induced by paraquat in rats[J].Chin J Emerg Med,2012,21(11):1198-1204. |
[8] | Underwood DC, Osborn RR, Bochnowicz S, et al.Ap38 MAPK inhibitor, reduces neutrophilia, inflammatory cytokines, MMP-9, and fibrosis in lung[J]. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol, 2000, 279 (5) : L895-902. |
[9] | Sen R, Baltimore D. Multiple nuclear factors interact with the immunoglobulin enhancer sequences[J]. Cell, 1986, 46(5):705-716.DOI: 10.1016/0092-8674(86)90346-6. |
[10] | Cowburn AS, Deighton J, Walmsley SR, et al. The survival effect of TNF-alpha in human neutrophils is mediated via NF-kappa B-dependent IL-8 release[J]. Eur J Immunol, 2004, 34 (6) :1733-1743. DOI: 10.1002/eji.200425091. |
[11] | Baeuerle PA, Baltimore D. Ⅰ kappa B: a specific inhibitor of the NF-kappa B transcription factor[J].Science, 1988, 242(4878):540-546. DOI: 10.1126/science.3140380. |
[12] | Abraham E.The dichotomy of inhibiting nuclear factor kappa-B in pneumonia[J]. Crit Care, 2013, 17 (3): 152. DOI: 10.1186/cc12722. |
[13] | Grisham MB, Granger DN, Lefer DJ,et al. Modulation of leukocyte-endothelial interactions by reactive metabolites of oxygen and nitrogen: relevance to ischemic heart disease[J]. Free Radic Biol Med, 1998, 25 (4/5) : 404-433. DOI: 10.1016/S0891-5849(98)00094-X. |
[14] | Comhair SA, Erzurum SC. Antioxidant responses to oxidant-mediated lung diseases[J]. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol, 2002, 283 (2) : L246-255. DOI: 10.1152/ajplung.00491.2001. |
[15] | Hanada T, Yoshimura A. Regulation of cytokine signaling and inflammation[J]. Cytokine Growth Factor Rev, 2002, 13 (4/5): 413-421. DOI: 10.1016/S1359-6101(02)00026-6. |
[16] | Janssen-Heininger YM, Poynter ME, Baeuerle PA,et al. Recent advances towards understanding redox mechanisms in the activation of nuclear factor kappaB[J]. Free Radic Biol Med, 2000,28 (9) : 1317-1327. DOI: 10.1016/S0891-5849(00)00218-5. |
[17] | Roebuck KA, Finnegan A. Regulation of intercellular adhesion molecule-1 (CD54) gene expression[J].J Leukoc Biol, 1999, 66 (6) : 876-888. |